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Zootecnia Tropical, 17(1) :19-32.1999 EFECTO DE LA PROTEINA SOBREPASANTE DE LA HARINA DE PESCADO SOBRE METABOLITOS SANGUINEOS DE NOVILLAS HOLSTEIN Mireya E. López M.1, Julio C. Garmendia2 y Nestor Obispo3 1NANTA de Venezuela C.A. Av.
Antón Phillips, zona Industrial |
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Los perfiles metabólicos sanguíneos de los animales constituyen una herramienta importante como indicadores sensibles y específicos de los cambios nutricionales que ocurren en un rebaño (3, 7) . Un análisis de éstos permitirla detectar y corregir a tiempo los desbalances que pudieran presentarse, incluyendo problemas metobólicos potenciales (18) . Por otra parte, dichos perfiles, constituyen un valioso instrumento de apoyo, ya que a través de su estudio se podrían detectar aquellos cambios,metabólicos que de una manera u otra, contribuyen con las respuestas productivas. El consumo de proteínas de baja degradabilidad en el rumen contribuyen al incremento de metabolitos sanguíneos (26), lograndose mejoras en el balance energético y por lo tanto de los índices productivos (6) y reproductivos del rebaño (17, 19). Este trabajo tuvo como objetivo evaluar el efecto de la inclusión en la dieta, de novillas Holstein prepuberes, de proteínas sobrepasantes sobre los metabolitos sanguíneos: glucosa, N-uréico, proteínas plasmáticas, ácidos grasos no esterifidados y colesterol. MATERIALES Y MÉTODOS Para la determinación de los efectos de la harina de pescado sobre la concentración plasmática de algunos metabolitos sanguíneos, veintisiete novillas Holstein con un peso promedio 202±35 kg y de aproximadamente 1 año de edad, se asignaron a los siguientes tratamientos experimentales: T0: Concentrado base de harina de harina de
maíz, harina de ajonjolí y urea (Control) Los animales del To recibieron 1.275 g del suplemento correspondiente por día, calculado para cubrir los requerimientos nutricionales, tanto de la flora microbiana como del animal. Los del T1 y T2 recibieron 1.525 y 1.775 g/d del suplemento correspondiente, respectivamente. Los suplementos se calcularon para que el aporte de nutrientes fuera similar. En el Cuadro 1 se presenta la composición relativa de los suplementos concentrados.
La dieta basal estuvo constituida por forraje, pasto Bermuda (Cynodon dactylon), de mediana calidad, cortado y ofrecido en los comederos (Cuadro 2), y sal mineral a voluntad. Los animales se mantuvieron en estabulación durante la realización del ensayo, el cual tuvo una duración de 60 días, de los cuales los primeros' quince días correspondieron al período de adaptación a la dieta.
Semanalmente se determinó la composición química de la ración basal (pasto de corte), materias primas y suplementos concentrados de la siguiente manera: las muestras fueron llevadas a estufa (65°C/24h) para obtener el contenido de materia seca. Posteriormente fueron molidas (criba ø imm) y enviadas al laboratorio para análisis de la materia seca (MS) a IOSOC, nitrógeno total (N) y extracto etéreo (1) ; fibra detergente neutra (FDN) (11) ; calcio (Ca) por espectrofotometría (8) y fósforo (P) por colorimetría (9). Se extrajeron muestras de sangre cada semana, antes del consumo del suplemento, en tubos contentivos de edetato sódico EDTA(Na2) . El plasma se separó por centrifugación y congelado a -20°C hasta la realización de los análisis de glucosa (Labtest), ácidos grasos no esterificados (AGNE) (15) , proteínas plasmáticas (Refractometría) y colesterol (Bioscience). Los datos obtenidos fueron analizados usando el procedimiento GLM del programa SAS (31) para un diseño completamente aleatorizado, usandose la edad y el peso inicial de los animales como covariables. Significancia fue declarada al nivel a=0,05. RESULTADOS Y DISCUSIÓN El forraje utilizado presentó en promedio un elevado valor de FDN (77,17), valores bajos del extracto etéreo (2,0), pero medianamente buenos de PC (8,26), lo que indica que el valor nutricional del forraje empleado fue medio-bajo (22,34) (Cuadro 2). En cuanto a la composición del suplemento (Cuadro 3) las mayores variaciones entre los tratamientos se observó en el nivel de PC y extracto etéreo, lo que se debió a la incorporación de harina de pescado.
Con la excepción de los valores del, colesterol que resultaron ser más altos (P<0,05) para los animales del T, (93, 17 mgldl) , con marcada diferencia con los del T, (86,82 mgldl) , no así con los del grupo control (92,17). En general, las concentraciones plasmáticas de los metabolitos sanguíneos no mostraron ser diferente entre los tratamientos. Es posible que los mecanismos homeostáticos pudieran haber ejercido un efecto mas siginficativo que variaciones en la composición de la dieta, requiriéndose probablemente grandes variaciones para producir anormalidades en la ,concentración sanguínea de los mismos 121). No obstante, los valores promedios de los metabolitos analizados coinciden con los valore! (Cuadro 4) reportados por Swanson (33) y Paterson (25).
Los valores de colesterol no coinciden con las observaciones de Wiley et al. (35), quienes consiguieron disminución en los niveles plasmáticos de colesterol en novillas de primer parto al suplementarlas con proteína sobrepasante. Aunque queda por demostrarse, una probable explicación de la diferencia entre los resultados de estas autores y los actuales podría ser la relacionada al estado fisiológico de los animales utilizados. Debido a que son requeridos grandes concentraciones de colesterol, o de sus promotores en la dieta para observar variaciones en sangre ( no mayores a un 15% por efecto de la dieta), esta respuesta quizás no se deba a efectos nutricionales, sino de otra índole, tales como las hormonas (5,13). Los valores de glicemia fueron similares en los grupos experimentales, sin embargo, los animales del Grupo 2 mostraron valores de glicemia superiores, numéricamente, al compararlos con los otros grupos (Cuadro 5). Knaus et al. (20), Guerino et al. (12) y Richards et al. (28) no encontraron variaciones en la glucosa sanguínea al suplementar con fuentes proteicas sobrepasantes, a pesar de que podría esperarse un incremento de este metabolito, por el efecto indirecto de incrementarse la proporción de precursores glucogénicos (24) . La proporción de propionato convertido a glucosa y la proporción de glucosa sintetizada apartir de propiónato, tiende a permanecer más o menos estable (10) ; sin embargo, Hennessy et al. (14) y Rusche et al. (30), reportan incrementos de este metabolito al usar harina de pescado, atribuyéndolo a un mayor consumo de energía metabolizable (EM) y de N por unidad de EM, así como también a una incrementada tasa de absorción de glucosa relacionada al mayor flujo de N no amoniacal al duodeno. Recientemente, Putnam y Varga (26) observan que incrementos en la proteína de la dieta, en vacas gestantes en el último tercio de la gestación, se tradujeron en un incremento lineal de los niveles de glucosa plasmática; aunque la eficiencia de la utilización de la proteína absorbida disminuyó en forma inversa al incremento de PC en la dieta. Igualmente, no hubo diferencias entre los niveles de AGNE por efecto de los suplementos (Cuadro 5) . Aparentemente, la concentración plasmática de este metabolito no es afectada ni por los cambios de los niveles protéicos de la dieta (29,32) , ni con la fuente proteica (30). Bishop y Wetteman (3) concluyen que los aumentos de AGNE durante la suplementación proteica podría ser indicadores de una pobre utilización de los nutrientes.
Contrariamente, Ortigues et al. (24) trabajando con novillas suplementadas con harina de pescado consiguieron incrementos marcados en la concentración de AGNE en plasma, sin registrar pérdidas de peso que pudieran relacionarse con movilización de grasa corporal con el consecuente cambio en los niveles séricos de AGNE (3,5,27,28) . Las pequeñas variaciones encontradas en la concentración de AGNE en sangre, entre los diferentes tratamientos pudieron deberse a las diferencias en el balance hormonal y necesidades energéticas (2). Aunque se han reportado incrementos de la concentración de proteínas plasmáticas, correlacionadas con el consumo de proteína cruda (21), los valores séricos de las proteínas plasmáticas en la presente investigación fueron idénticos entre los tratamientos (Cuadro 5) . Resultados similares a los aquí reportados han sido observados en las investigaciones de Jordan y Swanson (16) y Jordan et al. (17). En el caso del N-uréico, no hubo diferencias significativas entre tratamientos; sin embargo, a las 2 horas posteriores a la ingestión del alimento, se presentaron diferencias numéricas a favor del T2 (datos no presentados). En una investigación reciente, Knaus et al. (20) trabajando con novillos en la fase de cebado, observaron que las concentraciones de N-uréico incrementaron significativamente con los aumentos de los niveles de proteína de sobrepaso en la dieta. Wiley et al. (35) observan una respuesta similar con novillas de primer parto; sin embargo, muchos autores coinciden en que los valores de N-uréico disminuyen al usar proteínas de sobrepaso (3,14,17,21,23,30) en comparación con otro tipo de fuente proteica. Cuando se comparan la suplementación con harina de pescado en relación a una dieta a base de sólo pasto, en los valores séricos de este metabolito, se observa una ligera tendencia hacia la elevación, posiblemente porque la harina de pescado aumenta la cantidad de PC ingerida, incrementándose de esta manera, la posibilidad de una mayor producción de amonio ruminal, cuya absorción a este nivel se vería, por lo tanto, incrementada (4). CONCLUSIONES Con la excepción del colesterol cuyos valores plasmáticos disminuyen, las concentraciones de los metabolitos sanguíneos en novillas en crecimiento: AGNE, glucosa, N-aoniacal y proteínas plasmáticas, no son modificadas significativamente por la inclusión de proteínas sobrepasantes en la dieta. RESUMEN Para evaluar el efecto de la proteína sobrepasante de la harina de pescado (HP) sobre algunos metabolitos sanguíneos, 27 novillas de la raza Holstein, alimentadas con una dieta a base de pasto Bermuda (Cynodon dactylon), fueron asignadas en tres tratamientos experimentales: T0(control) : 1275 g/día de un suplemento compuesto por harina de maíz (71,171), harina de ajonjolí (15,69%), melaza (10%) y urea (3,14%) ; T1: T0 + 250 g de HP; T2 T0 + 500 g de HP. Los datos obtenidos fueron analizados mediante un diseño completamente aleatorizado, usando la edad y peso inicial como covariables. Los valores de glicemia, Ácidos grasos no esterificados, proteínas plasmá.ticas y nitrógeno uréico fueron similares entre los grupos experimentales. Las concentraciones de glucosa permanecieron constantes en las diferentes horas postconsumo del suplemento. Las mayores concentraciones plasmáticas de colesterol se encontraron en los animales del T1 (93,17 mg/dl) , siendo marcada la diferencia (P<0,05) con los animales del grupo 3 (86,82 mg/dl) , no así con los del grupo control (92,17 mg/dl). Se concluye que, a excepción del colesterol, los demás metabolitos sanguíneos no son afectados por la inclusión de harina de pescado en la dieta. Palabras Clave: Novillas lecheras, proteína sobrepasante, metabolitos sanguíneos, harina de pescado. EFRECT OF BYPASS PROTEIN FROM FISHMEAL ON PLASMATIC METABOLITES OF HOLSTEIN HEIFERS SUMMARY To evaluate the effect of feeding bypass protein on some plasma metabolites, 27 Holstein heifers, fed chopped Bermúda grass (Cynodon dactylon) , were assigned to three supplementation treatments: T0 (Control) . 1.275 g/d of corn meal (71.17%) , sesame meal (15. 69Y) , molasses (1 0%) and urea (3. 14W) ; T1 - Control plus 250 q/d of fish meal; T2: Control plus 500 q/d of fish meal. Data were analyzed in a complete randomized design with age and initial weight as cavariates. Glucose, nonesterified fatty acids, plasmatic proteins and urea concentrations in plasma were not affected by feeding undegradable protein (UIP). The highest (P<0.05) plasmatic concentrations of cholesterol were observed in the animals of the T2 group (93.17 mg/dl) and the lowest for the T2 group (86.82 mg/dl) . No change was observed for the control group (92.17 mg/dl). Therefore, these results show that except cholesterol, the other plasma metabolites are not affected by including the UIP to the diet. Key Word: Dairy heifers, bypasa protein, plasma metabolitas, fish meal BIBLIOGRAFÍA 1. ASSOCIATION OF OFFICIAL ANALYTICAL CHEMISTS (AOAC). Official Methods of Analysis (14 th ed.). Association of Official Analytical Chemists. Arlington, VA. 1141 pp. 1984. 2. BEITZ, D.C. y C.E. ALLEN. Lipid metabolism. En: Dukes' Physiology of Domestic Animals. Ed. Cornell University Press, London. 922 pp. 1984. 3. BISHOP, D.K. y R.P WETTEMANN. Blood metabolites in steers fed protein supplement daily or at 4-day intervals. Animal Science Research Report. Oklahoma Agricultural Experiment Station, 245-250. 1992. 4. CHALUPA, W. Problems in feeding urea to ruminants. J. Anim. Sci., 27:207-219. 1968. 5. DIMARCO, N.M. 1 D.C. BEITZ y G.B. WHITEHURST. Effect of fasting on free fatty acid, glycerol and cholesterol concentrations in blood plasma and lipoprotein lipase activity in adipose tisáue of cattle. J. Anim. Sci., 52:75-82. 1981. 6. DONALDSON, R.S., M.A. McCANAN, H.E. AMOS y C.S. HOVELAND. Protein and fiber digestion by steers grazing winter annuals and supplemented with ruminal escape protein. J. Anim. Sci., 69:3067-3071. 1991. 7. FERREIRA, A. DE M. y C.A. ALVES TORRES. Glucose e lipídios totais como indicadores de "status" nutricional de bovinos. Rev. Soc. Bras. Zoot., 21:339-345. 1992. 8. FICK, K., L. McDOWELL, P. MILES, N. WILKINSON, J. FUNK y J. CONRAD. Métodos de análisis de minerales para tejidos de plantas y animales. Universidad de Florida, Gainesville, U.S.A. 2d Ed. 1979. (Mimeo) . 9. FISKE, C. y Y. SUBARROW. The colorimetric determination of phosphorus. J. Biol. Chemistry, 66:375-383. 1925. 10. GILL, M. y D.E. BEEVER. The effect of protein supplementation on digestion and glucose metabolism in young cattle fed on silage. Br. J. Nutr., 48:37-47. 1982. 11. GOERING H. y P. VAN SOEST. Forage Fiber Analysis. (Apparatus,Reagents, Procedures, and Some Applications) . Agric. Handbook NO379. ARS-USDA. Washington DC. Agriculture Handbook NO 21. 1970. 12. GUERINO, F., G. HUNTINGTON, R. ERDMAN y T. ELSASSER. Effects of high protein diet on plasma metabolites and hormone concentrations and glucose homeostasis in growing Holstein steers. J. Animal Sci., 67 y J. Dairy Sci. 72:535. 1989. 13 GUYTON, A. Tratado de Fisiología Médica. Ed. Interamericana. España. 1159 pp. 1977. 14. HENNESSY, D.W. y P.J. WILLIAMSON. The roles of energy or protein-rich supplements in the subtropics for young cattle consuming basal diets that are low in digestible energy and protein. J. Agric. Sci., Camb., 100:657-666. 1983. 15. ITAYA, 16. K. . A more sensitiva and stable colorimetric determination of free fatty acids in blood. J. Lipid Res. 18:663. 1977. 16. JORDAN, E.R. y L.V. SWANSON. Effect of crude protein on reproductive efficiency, serum total protein and albumin in the high-producing dairy cow. J. Dairy Sci., 62:58-63. 1979. 17. JORDAN, E.R., T.E. CHAPMAN, D.W. HOLTAN y L.V. SWANSON. Relationship of dietary crude protein to composition of uterine secretions and blood in high-producing postpartum dairy cows. J. Dairy Sci., 66:1854-1862. 1983. 18. KANEENE, J. B. R. MILLLER, T. H. HERDT y J. C. GARDINER. The association of serum noesterified fatty acids and cholesterol, management and feeding practices with peripartum disease in dairy cows. Prev. Vet. Med., 31;59-72. 1997. 19. KAPPEL, C., R.H. INGRAHAM, B.3. MORGAN, L. ZERINGUE, D. WILSON, K. BABCOCK y M.A. STAT. Relationship between fertility and blood glucose and cholesterol concentrations in Holstein cows. Am. J. Vet. Res., 45:2607-2612. 1984. 20. KNAUS, W.P, D.H. BEERMANN, T.F. ROBINSON, D.G. FOX y K.D. FINNERTY. Effects of a dietary mixture of meat and bone meal, feather meal, blood meal and fish meal on nitrogen utilization in finishing Holstein steers. J. Anim. Sci. , 76:1481-1487. 1998. 21. LEE, A.J., A.R. TWARDOCK, R.H. BUBAR, J.E. HALL y C.L. DAVIS. Blood metabolic profiles: their use and relation to nutritional status of dairy cows. J. Dairy Sci., 61:1652-1670. 1978. 22. MINSON, D. Nutritional differences between tropical and temperate pastures. En: Graling Animals. Ed Morley F. Amsterdam. Elsevier. pp 143-157. 1981. 23. OLDHAM, J.D., D.J. NAPPER, T. SMITH y R. J. FULFORD. Performance of dairy cows offered isonitrogenous diets containing urea or fishmeal in early and in midlactation. Br. J. Nutr., 53-337-345. 1985. 24. ORTIGUES, I., T. SMITH, J.D. OLDHAM, A.B. McALLAN y J.W. SIVITER. Nutrient supply and growth of cattle offered straw-based diets. Br. J. Nutr., 62:601-619. 1989. 25. PATTERSON, D.S. Some observations on the estimation of non-esterified fatty acid concentrations in cow and sheep plasma. Res. Vet. Sci., 4:230-239. 1963. 26. PUTNAM, D.2. y G.A. VARGA. Protein density and its influence on metabolite concentration and nitrogen retention by Holstein cows in late gestation. J. Dairy Sci. , 81: 1608-1618. 1998. 27. RANDEL, R.D. Nutrition and postpartum rebreeding in cattle. J. Anim. Sci., 68:853-862. 1990. 28. RICHARDS, M.W., R.P. WETTEMANN y H.M. SCHOENEMANN. Nutritional anestrus in beef COWS: concentrations of glucose and nonesterified fatty acids in plasma and insulin in serum. J. Anim. Sci., 67: 2354-2362. 1989. 29. RICHARD, A.L., G.A. VARGA y T.J. WHITSEL. Rumen protected methionine (RPmet) and lysine (RPlys) on net portal nutrient flux in Holstein cows. J. Dairy Sci., 73.169 (supp1 ). 1989. 30 RUSCHE, W.C., R.C. COCHRAN, L.R. CORAH, J.S. STEVENSON, D.L. HARMON, R.T. BRANDT Jr. y J.C. MINTON. Influence of source and amount of dietary protein on performance, blood metabolites and reproductive function of primiparous beef cows. J. Anim. Sci., 71:557-563. 1993. 31. 32. SASI& User's Guide Version 6, Release 6.07. Inst. Ine. Cary, NC. 1993. 32. SPAIN, J., C. POLAN y A. WATKINS. Effect of fishmeal on milk yield, composition, ruminal volatile fatty acids, and plasma fatty acid profiles. J. Dairy Sci., 72:507 (Suppl l). 1989. 33. SWANSON, M.J. Physiological properties and cellular and chemical constituents of blood. Dukes' Physiology of Domestic Animals. Ed. Cornell University Press. London. 922 pp. 1984. 34 . VAN SOEST, P. J. Nutritional Ecology of the Ruminant. 0 & B Books. Corvallis, OR. 374 pp. 1983. 35 . WILEY, J.S., M.K. PETERSEN, R.P. ANSOTEGUI y R.A. BELLOWS. Production from first-calf heifers fed a maintenance or low level of prepartum nutrition and ruminally undegradable or degradable protein postpartum. J. Anim. Sci., 69:4279-4293. 1991. SAS |
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